Selecteer een pagina

Fibroblastcel

Cultuurprotocollen

 

Protocol voor het subkweken en invriezen van fibroblasten

Groeimedia

DMEM – ThermoFisher #11960-044 (hoge glucose zonder L-glutamine)

15% FBS foetaal runder serum – ThermoFisher #10437-028

1% (1X) Penicilline-streptomycine – ThermoFisher #15140-122

1% (1X) GlutaMAX – ThermoFisher #35050-061

Trypsine

Trypsine EDTA C 0,25% (ThermoFisher #25200-056)

Hank's gebalanceerde zoutoplossing

HBSS- (ThermoFisher #14170 (1X) (-) calciumchloride, (-) magnesiumchloride, (-) magnesiumsulfaat

DMSO voor invriezen

Celcultuurkwaliteit DMSO – Sigma #D2438

Ontdooien van PRF-cellijnen

  1. Ontdooi de cellen snel in een waterbad van 37˚C.
  2. Veeg de buitenkant van het flesje schoon met 70%-ethanol.
  3. Breng de ontdooide cellen over in een T25-fles met 5 ml groeimedium.
  4. Plaats de kolf een nacht in een broedstoof bij 37˚C.
  5. Bekijk de volgende dag onder de microscoop of de cellen zich hebben gehecht.
  6. Verwijder de media en vervang ze door nieuwe groeimedia.

Subculturen van PRF-cellijnen

  1. Cellen zouden gesplitst moeten worden als ze samenvloeien.
  2. Om cellen te splitsen (de opgegeven volumes zijn gebaseerd op de veronderstelling dat de cellen zich in een T25 bevinden):
    a) Verwijder de media met behulp van een steriele techniek en spoel de kolf met 2-3 ml steriele HBSS. Verwijder de HBSS en gooi deze weg.
    b) Voeg 1 ml trypsine toe en incubeer 2-3 minuten. Cellen moeten onder een omgekeerde microscoop worden gecontroleerd om te bepalen of ze zijn begonnen met ronddraaien, optillen en drijven. Als de cellen na 3 minuten niet loskomen, kunt u nog eens 1-2 minuten incuberen.
    c) Draai de dop vast en kantel de kolf voorzichtig van links naar rechts om alle cellen los te maken. De kolf kan indien nodig lichtjes op de zijkant worden getikt om de cellen los te maken.
    d) Voeg 4 ml nieuwe media toe aan de kolf zodra de cellen drijven om de trypsine te inactiveren. Spoel de zijkanten van de kolf meerdere keren af met de nieuwe media om alle cellen van het plastic en in de oplossing te wassen. Verwijder alle vloeistof met cellen en giet over in een conische 15 ml (of 50 ml als u 3 of meer kolven samenvoegt).
    e) Neem met behulp van een steriele techniek een aliquot om te tellen op een hemocytometer.
    f) Terwijl u de cellen telt, moet de rest van de oplossing gedurende 5 minuten bij 1000 toeren per minuut in de klinische centrifuge worden gecentrifugeerd.
  3. Nadat u uw celtelling hebt berekend, plaatst u de cellen op 2,5 x 105 cellen per T25-filtertopkolf.
  4. De cellen moeten elke 2-3 dagen gevoed worden met vers groeimedium.

Bevriezen:

Cellen moeten worden ingevroren bij minimaal 5 x 105 cellen/ml/cryovial in groeimedia met 10% DMSO en 30% FBS en vervolgens 's nachts in een isopropanolvrieskamer bij -80˚C geplaatst. De volgende dag overbrengen naar vloeibare stikstof.

Protocol voor het subkweken en invriezen van fibroblasten

Voor meer informatie kunt u contact opnemen met:

Leslie B. Gordon, MD, PhD

Hoogleraar kindergeneeskundeonderzoek Warren Alpert Medische faculteit van Brown University en afdeling kindergeneeskunde, Hasbro Children's Hospital, Providence, RI Afdeling anesthesie, Children's Hospital Boston en Harvard Medical School, Boston, MA Medisch directeur, The Progeria Research Foundation

Telefoon: 978-535-2594
Faxen: 508-543-0377
lgordon@progeriaresearch.org

Wendy Norris
PRF-cel- en weefselbank
Telefoon: 401-274-1122 x 48063
wnorris@brownhealth.org
nl_NLDutch